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技術(shù)文章

PCR及其改進(jìn)技術(shù)在食品微生物檢測中的應(yīng)用


                                                                       PCR及其改進(jìn)技術(shù)在食品微生物檢測中的應(yīng)用
                                                                                                柳洪芳1,宋 慧2

                                               (1.黑龍江省農(nóng)墾科學(xué)院測試化驗(yàn)中心,黑龍江佳木斯154007;2.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院)

摘要:簡述了PCR及其幾種改進(jìn)技術(shù),并對(duì)其在食品微生物檢測中的應(yīng)用進(jìn)行綜述。
關(guān)鍵詞:PCR改進(jìn)技術(shù);食品微生物;檢測

     民以食為天,食以安為先。食品**是關(guān)系到人體健康和國計(jì)民生的重大問題。食品中的微生物是人類許多**發(fā)生的根源之一,隨著人們對(duì)食品**性認(rèn)識(shí)的不斷提高,傳統(tǒng)的微生物檢測方法因檢測成本高、速度慢、效率低等問題,難以滿足現(xiàn)代社會(huì)快速檢測的要求。而PCR及其改進(jìn)技術(shù)以其特異性強(qiáng)、快速準(zhǔn)確和靈敏度高等優(yōu)點(diǎn)在食品微生物檢測領(lǐng)域得到廣泛的應(yīng)用。

1 常規(guī)PCR技術(shù)及其在食品微生物檢測中的應(yīng)用
  多聚酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain?。颍澹幔悖簦椋铮睿校茫遥┦牵保梗福的昝绹模耍粒遥佟。停眨蹋蹋桑拥热藙?chuàng)建的一種在體外快速擴(kuò)增特定基因或DNA序列的方法,也稱基因的體外擴(kuò)增法,其擴(kuò)增過程包括以下3個(gè)步驟:①變性,即將模板雙鏈DNA序列置于95℃高溫下,使其變性解鏈成兩個(gè)單鏈模板。②退火,低溫(50~65℃)時(shí),使人工合成的兩個(gè)引物與單鏈DNA模板特異性地互補(bǔ)結(jié)合。③延伸,在適宜的溫度(72℃)下,DNA 聚合酶以單鏈DNA 為模板,沿5,→3方向摻入核苷酸,使引物延伸合成模板的互補(bǔ)鏈,這就是新合成的DNA雙鏈。新合成的DNA雙鏈又可作為擴(kuò)增的模板,繼續(xù)重復(fù)以上的DNA多聚酶鏈反應(yīng)程序,就使得DNA 片斷得到有效的擴(kuò)增。
     PCR技術(shù)具有快速、靈敏、操作方便等優(yōu)點(diǎn),早在1992年NAKA?。剩桑停痢。龋郏保堇茫校茫曳椒▽?duì)病原菌進(jìn)行檢測,而利用PCR技術(shù)檢測食品中病原微生物到近些年來才比較廣泛應(yīng)用。劉勝貴[2]等人利用PCR技術(shù)檢測豬肉中沙門氏菌,對(duì)已知和未知被沙門氏菌污染的豬肉的培養(yǎng)物均能準(zhǔn)確檢測。對(duì)不同稀釋度的樣品進(jìn)行PCR擴(kuò)增,當(dāng)DNA含量只有0.01pg時(shí),還能擴(kuò)增出條帶,說明該方法檢測豬肉中沙門氏菌具有特異性高且靈敏、快速等特點(diǎn)。巢國祥[3]等人通過PCR法擴(kuò)增hly基因建立快速檢
測單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌(Lm)的方法。并檢測模擬污染生豬肉、水和牛奶,檢測限達(dá)10cfu/25g(mL)。該方法對(duì)Lm的鑒定具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、速度快和易操作等優(yōu)點(diǎn),可用于食品的Lm的分離檢測。

2?。校茫腋倪M(jìn)技術(shù)在食品微生物檢測中的應(yīng)用
  隨著生物技術(shù)的飛速發(fā)展和各項(xiàng)新技術(shù)與PCR技術(shù)的有機(jī)結(jié)合,衍生出一些PCR改進(jìn)技術(shù)。主要介紹實(shí)時(shí)熒光定量PCR、多重PCR、IMS-PCR、DGGE-PCR等4種PCR改進(jìn)技術(shù)及其在食品微生物檢測中的應(yīng)用。
2.1 實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)及其在食品微生物檢測中的應(yīng)用
實(shí)時(shí)熒光定量PCR(Real-time?。疲欤酰颍澹螅悖澹睿簦眩酰幔睿簦椋簦椋觯濉。校铮欤恚澹颍幔螅濉。茫瑁幔椋睢。遥澹幔悖簦椋铮睿┘夹g(shù),是指在PCR反應(yīng)體系中加入熒光染料或熒光探針,利用熒光信號(hào)積累實(shí)時(shí)監(jiān)測整個(gè)PCR進(jìn)程,*后通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知模板進(jìn)行定量分析的方法。此技術(shù)于1996年由美國Applied?。拢椋铮螅螅簦澹恚蠊就瞥?,該技術(shù)實(shí)現(xiàn)了PCR 從定性到定量的飛躍,除了具有常規(guī)PCR的快速、靈敏、操作方便等特點(diǎn)外,還具有以下優(yōu)點(diǎn):全封閉反應(yīng),無需凝膠電泳等PCR后處理,減小對(duì)環(huán)境的污染;不使用有毒試劑,操作**;定量準(zhǔn)確;儀器在線實(shí)時(shí)監(jiān)測,結(jié)果直觀。該技術(shù)的諸多優(yōu)點(diǎn)使之在食品微生物的檢測中的應(yīng)用越來越廣泛。李光偉[4]等針對(duì)沙門氏菌fimY 基因,設(shè)計(jì)特異引物和探針,建立了檢測食品中沙門菌的RTQ-PCR方法。其檢測靈敏度為180cfu/mL,與國標(biāo)法檢出的陽性樣本數(shù)基本保持一致,準(zhǔn)確率達(dá)99.7%。高虹[5]等建立了奶粉中阪崎腸桿菌RTQ-PCR檢測方法。其所建立的方法特異性強(qiáng),靈敏度高,在2.2~5.4cfu/l00g范圍內(nèi)線性關(guān)系良好;與FDA方法比對(duì)實(shí)驗(yàn)表明,兩種方法的檢測結(jié)果完全一致。翁文川[6]等人針對(duì)單增李斯特氏菌溶血素基因(hIyA),設(shè)計(jì)特異的引物TagMan探針,優(yōu)化體系,建立了食品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的熒光定量PCR檢測方法,該方法檢測低限為1cfu/g,整個(gè)流程只需27h。與傳統(tǒng)方法進(jìn)行對(duì)比,結(jié)果一致。Lkeda[7]等根據(jù)金黃色葡萄球菌的sea和nuc基因設(shè)計(jì)引物,建立了脫脂奶粉中金黃色葡萄球菌的RTQ-PCR檢測方法。
2.2 多重PCR技術(shù)及其在食品微生物檢測中的應(yīng)用
    多重PCR是通過對(duì)普通PCR技術(shù)的改進(jìn)而建立起來的一種技術(shù),是將多條引物和多條模板混合在一個(gè)反應(yīng)體系中分別特異擴(kuò)增不同的目的條帶,或者多條引物和單一的模板DNA混合在同一反應(yīng)體系中擴(kuò)增同一模板的不同片斷,常用于對(duì)超長片斷的擴(kuò)增。與常規(guī)的PCR相比,還具有擴(kuò)增效率高、產(chǎn)物特異性高和經(jīng)濟(jì)簡便等特點(diǎn),特別適合食品中多種致病菌的快速檢測。梁會(huì)營[8]等根據(jù)阪崎腸桿菌外膜蛋白A(ompA)基因和金黃色葡萄球菌耐熱核酸酶(nuc)基因序列,設(shè)計(jì)兩對(duì)特異性引物,并優(yōu)化了PCR的條件,建立了嬰幼兒奶粉中常見病原菌的多重PCR檢測方法。結(jié)果表明,該方法具有很高的特異性,混菌檢測靈敏度達(dá)到103cfu/mL,為快速檢測奶粉中病原菌提供了有效手段。陳偉[9]等對(duì)金黃葡萄球菌的nuc基因、單增李斯特菌的hlv基因和蠟樣芽孢桿菌的hemolysin基因設(shè)計(jì)了引物,建立了3種致病菌的多重PCR檢測體系,結(jié)果顯示該方法檢測結(jié)果與單基因PCR檢測的靈敏度相同,結(jié)果穩(wěn)定。整個(gè)檢測過程在16h內(nèi)完成,檢測靈敏度可達(dá)lcfu/mL。王艷君[10]等人針對(duì)沙門氏菌編碼DNA結(jié)合蛋白
的基因hns、大腸桿菌O157∶H7編碼外膜蛋白緊密素的基因eaeA 和單核細(xì)胞增生李斯特氏菌溶血素O基因Hly設(shè)計(jì)3對(duì)引物,建立同步檢測肉制品中3種致病菌的多重PCR方法。通過對(duì)多重PCR特異性和靈敏度進(jìn)行分析及對(duì)多重PCR反應(yīng)條件進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果表明,該方法簡便、快速,可使混菌檢測靈敏度達(dá)到103cfu/mL。KAWASAKIS[11]等人利用多重PCR方法同時(shí)檢測肉類中的沙門菌、李斯特菌和大腸桿菌O157∶H7,通過UPB增菌培養(yǎng)基增菌后檢測敏感性可達(dá)到1cfu/25g。

2.3?。桑停樱校茫壹夹g(shù)及其在食品微生物檢測中的應(yīng)用
**磁珠技術(shù)(immunomagnetic beads?。簦澹悖瑁睿椋瘢酰澹螅┦牵玻笆兰o(jì)70年代中期發(fā)展起來的一項(xiàng)新的**學(xué)檢測和分離技術(shù)。其原理是磁珠經(jīng)過一定的處理后,可結(jié)合某種微生物特異性抗體,形成**磁珠。將這種帶有特異性抗體的**磁珠加到待測樣品中,相應(yīng)的抗原物質(zhì)就會(huì)和**磁珠上的抗體發(fā)生特異性結(jié)合,形成抗原-抗體-磁珠**復(fù)合物,此復(fù)合物在外加磁場的作用下發(fā)生定向移動(dòng),使復(fù)合物與其他物質(zhì)分離,從而達(dá)到快速分離抗原物質(zhì)的目的[12]。該技術(shù)不僅具備了固相化試劑特有的優(yōu)
點(diǎn)以及**學(xué)反應(yīng)的高度特異性,還具有高效、快速、可重復(fù)性好、操作簡單和不需昂貴的儀器設(shè)備等優(yōu)點(diǎn)。現(xiàn)已在細(xì)胞分離和培養(yǎng)、生物大分子純化、**學(xué)及微生物學(xué)檢測等領(lǐng)域得到了廣泛應(yīng)用。該技術(shù)與PCR結(jié)合,可大大縮短食品中致病菌檢測時(shí)間,同時(shí)也增加了檢測的特異性,克服PCR檢測中易出現(xiàn)假陽性的弱點(diǎn)。近年來,IMSPCR技術(shù)已應(yīng)用于食品微生物的檢測中。李敏[13]等研究表明,將IMS與多重PCR結(jié)合,24h內(nèi)即可檢出食品中的單增李斯特菌,*低檢測限可達(dá)1cfu/25g(mL)。王曉聞[14]等建立了沙門氏菌的磁捕獲-PCR檢測方法,實(shí)驗(yàn)包括前增菌、**磁珠制備分離、DNA提取及PCR擴(kuò)增,7h即可完成檢測過程,且檢測靈敏度為9cfu/mL。結(jié)果表明該方法操作簡便、用時(shí)短、檢出率高。翁文川[15]等應(yīng)用抗李氏菌**磁珠從增菌肉湯中篩選和富集目的菌。通過熒光PCR技術(shù)檢測李氏菌溶血素hlyA基因,建立了單增李斯特氏菌的**磁分離-熒光PCR方法。該方法檢測肉類制品中單增李斯特氏菌簡便易行,可在27h內(nèi)完成,特異性好,檢測低限為1cfu/g。

2.4 PCR-DGGE技術(shù)及其在食品微生物檢測中的應(yīng)用
PCR-DGGE的技術(shù)是Sheffield等于1989年**提出的,將PCR 和變性梯度凝膠電泳的(DGGE)分析技術(shù)結(jié)合起來是一種可將長度相同而序列不同的DNA 片段混合物分離開的一項(xiàng)技術(shù)。DGGE的基本原理是:由于DNA分子中4種堿基的組成和排列存在差異,造成不同序列的DNA分子的解鏈溫度不同,解鏈時(shí)所需的變性劑
的濃度也不同。當(dāng)雙鏈DNA 分子在含梯度變性劑(尿素、甲酰胺)的聚丙烯酰胺凝膠中進(jìn)行電泳時(shí),會(huì)致使序列不同的DNA片段會(huì)在各自相應(yīng)的變性劑濃度下變性,從而使DNA分子的遷移速度不斷下降,當(dāng)產(chǎn)生的遷移阻力與電場力相對(duì)平衡時(shí),不同序列的DNA 片段滯留于凝膠的不同位置,形成相互分開的帶譜。理論上只要選擇的電泳條件足夠精細(xì),有一個(gè)堿基差異的DNA長段都可以被分開。PCR-DGGE技術(shù)具有可檢測不可培養(yǎng)類細(xì)菌、檢測時(shí)間短、檢測率高、重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn)。近些年來,此技術(shù)在食品中檢測微生物后應(yīng)用也有報(bào)道。COCOLIN[16]等建立一種直接檢測食品中李斯特菌屬的分子生物學(xué)方法。通過PCR擴(kuò)增李斯特菌和標(biāo)準(zhǔn)菌株的特異iap基因,擴(kuò)增產(chǎn)物再用DGGE進(jìn)
行分離,鑒定出五種李斯特菌。李苗云[17]等研究冷卻豬肉貯藏過程中的微生物變化,直接提取不同冷藏天數(shù)肉樣DNA,對(duì)細(xì)菌16SrDNA的v6-v8區(qū)段進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,通過DGGE 及序列分析,結(jié)果表明,冷卻豬肉耗氧貯藏過程中的微生物主要有:熱殺索絲菌、莫拉氏菌、氣單胞菌、假單胞菌、葡萄球菌和節(jié)桿菌,為快速檢測冷卻豬肉中的微生物污染提供新思路。
  總之,由于PCR及其改進(jìn)技術(shù)可以快速特異地?cái)U(kuò)增任何期望的DNA 片斷和目的基因,使其在食品微生物檢測領(lǐng)域已有著實(shí)際的應(yīng)用。但在實(shí)際應(yīng)用中也表現(xiàn)出一些缺陷,例如由于引物之間的抑制或引物和其它模板間的非特異性結(jié)合可能導(dǎo)致出現(xiàn)假陽性;實(shí)驗(yàn)條件不當(dāng)可能導(dǎo)致產(chǎn)物產(chǎn)生突變;引物設(shè)計(jì)及靶序列選擇不當(dāng)可能降低靈敏度和特異性等。盡管還存在著一定的問題,相信隨著PCR及其改進(jìn)技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展和完善,PCR及其改進(jìn)技術(shù)在食品微生物檢測領(lǐng)域會(huì)有更加廣泛的應(yīng)用,發(fā)揮更大的作用,必將把食品微生物檢測技術(shù)帶入一個(gè)新階段。
  


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